Бактеріальна біоінокуляція як спосіб підвищення морфометричних показників однорічних сіянців сосни звичайної
Анотація
За результатами дослідження встановлено, що бактеріальний штам P. abietaniphila є представником рістстимулювальних бактерій. Він проявив одну із ключових властивостей Plant Growth-Promoting Bacteria (PGPB), а саме здатність продукувати фітогормон ауксинової природи – індолілтриоцтову кислоту (ІОК) у кількості 85,06 мг на літр поживного середовища. З'ясовано, що ця властивість бактерій сприяє розвитку системної резистентності рослин та збільшенню морфофізіологічних показників проростків після біоінокуляції. Спостерігали за збільшенням довжин кореневих систем в однорічних сіянців, що попередньо інокулювалися з бактеріальним штамом P. abietaniphila на 57,7–58,7 %. Виявлено, що тенденція до збільшення довжини кореневої системи сіянців відобразилася на збільшенні сирої маси однорічних сіянців. Для дослідної групи, що обробляли суспензією з 109 КУО/мл, це значення становило 0,283 г, а для інокулянту з 108 КУО/мл – 0,210 г, тоді як для контрольної групи сіянців – 0,117 г. Загалом вдалося встановити, що загальна довжина інокульованих сіянців з бактеріальним штамом P. abietaniphila у всіх варіантах дослідження зростає завдяки збільшенню довжини кореневої системи. Проте з'ясовано, що оброблення 14-добових проростків суспензією, що містила 109 КУО/мл, спричинило збільшення довжини надземної частини однорічних сіянців на 20 %, порівняно з відповідним контролем. Результати наших досліджень свідчать, що бактеріальний штам P. abietaniphila потенційно покращить адаптацію сіянців сосни до природних умов середовища. Це свідчить про на перспективність використання його у практиці лісового господарства, для отримання високоякісних сіянців та саджанців сосни звичайної.
Посилання
Biological fire. (2018). The area of trees drying is almost 400 thousand hectares. State Agency of Forest Resources of Ukraine. Retrieved from: https://dklg.kmu.gov.ua/forest/control/uk/publish/ article?art_id=194269&cat_id=32888&fbclid=IwAR1TnrfSCTN-YfHkQur8bwEbh2WsQFmBERuDL6UVovG9YstHRknbzCDboh4.
Castro, R. A., Dourado, M. N., Almeida, J. R., Lacava, P. T., Nave, A., Melo, I. S., & Quecine, M. C. (2018). Mangrove endophyte promotes reforestation tree (Acacia polyphylla) growth. Brazilian journal of microbiology: publication of the Brazilian Society for Microbiology, 49(1), 59–66. https://doi.org/10.1016/j.bjm.2017.04.002
Chen, Y. P., Rekha, P. D., Arun, A. B., Shen, F., Lai, W., & Young, C. (2006). Phosphate solubilizing bacteria from subtropical soil and their tricalcium phosphate solubilizing abilities. Appl. Soil Ecol., 34, 33–41. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2005.12.002
Datta, C., & Basu, P. (2000). lndole acetic acid production by a Rhizobium species from root nodules of a leguminous shrub Cajanus cojan. Microbiol. Res., 155, 123–127. https://doi.org/10.1016/S0944-5013(00)80047-6
Glick, B. (2005). Modulation of plant ethylene levels by the bacterial enzyme ACC deaminase. FEMS Microbiol Lett., 251, 1–7. https://doi.org/10.1016/j.femsle.2005.07.030
Glick, B. (2012). Plant growth-promoting bacteria: Mechanisms and applications. Scientifica, 1–15. https://doi.org/10.6064/2012/963401
Glick, B., Cheng, Z., Czarny, J., & Duan, J. (2007). Promotion of plant growth by ACC deaminasecontaining soil bacteria. Eur. J. of Plant Pathol., 119, 329–339. https://doi.org/10.1080/07352680701572966
Gordon, S. A., & Weber, R. P. (1951). Colorimetric estimation of indole acetic acid. Plant Physiol., 26, 192–195. https://doi.org/10.1104/pp.26.1.192
Hallmann, J., Quadt-Hallmann, A., Mahaffee, A. W., & Kloepper, J. W. (1997). Endophytic bacteria in agricultural crops. Can. J. Microbiol., 43, 895–914. https://doi.org/10.1139/m97-131
Iturritxa, E., Trask, T., Mesanza, N., Raposo, R., Elvira-Recuenco, M., & Patten C. (2017). Biocontrol of Fusarium circinatum infection of young Pinus radiata trees. Forests, 8, 32. https://doi.org/10.3390/f8020032
Karličić, V., Golubović Ćurguz, V., & Raičević, V. (2016). The alleviation of reforestation challenges by beneficial soil microorganisms. Reforesta, 1, 238–260. https://doi.org/10.21750/REFOR.1.12.12
Kloepper, J. W., Lifshitz, R., & Zablotowicz, R. M. (1989). Free-living bacterial inocula for enhancing crop productivity. Trends Biotechnol., 7, 39–43. https://doi.org/10.1016/0167-7799(89)90057-7
Martin, V. J., Yu, Z., & Mohn, W. W. (1999). Recent advances in understanding resin acid biodegradation: microbial diversity and metabolism. Arch. Microbiol., 172(3), 131–138. https://doi.org/10.1007/s002030050752
Meliani, A., Bensoltane, A., Benidire, L., & Oufdou, K. (2017). Plant Growth-Promotion and IAA Secretion With Pseudomonas fluorescens and Pseudomonas putida. Research & Reviews: Journal of Botanical Sciences, 6(2), 16–24. Retrieved from: https://www.rroij. com/open-access/plant-growthpromotion-and-iaa-secretion-withpseudomonas-fluorescens-and-pseudomonas-putida-.pdf
Mesanza, N., Iturritxa, E., & Patten, C. L. (2016). Native rhizobacteria as biocontrol agents of Heterobasidion annosum s.s. and Armillaria mellea infection of Pinus radiata. Biol. Control., 101, 8–16. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2016.06.003
Mohn, W., Wilson, A., Bicho, P., & Moore, E. (1999). Physiological and phylogenetic diversity of bacteria growing on resin acids. Syst. Appl. Microbiol., 22(1), 68–78. https://doi.org/10.1016/S0723-2020(99)80029-0
Moraga-Suazo, P., & Sanfuentes, E. (2017). Growth promotion of Pinus radiata seedlings by soil inoculation and seed pretreatment with the biological control agent Clonostachys rosea. Gayana Bot., 74(1), 140–146. https://doi.org/10.4067/S0717-66432017005000106
Patten, C. L., & Glick, B. R. (2002). The role of bacterial indoleacetic acid in the development of the host plant root system. Appl. Environ. Microbiol., 68, 3795–3801. https://doi.org/10.1128/AEM.68.8.3795-3801.2002
Reetha, S., Bhuvaneswari, G., Thamizhiniyan, P., & Ravi Mycin, T. (2014). Isolation of indole acetic acid (IAA) producing rhizobacteria of Pseudomonas fluorescens and Bacillus subtilis and enhance growth of onion (Allim cepa. L). Int. J. Curr. Microbiol. App. Sci., 3(2), 568–574. Retrieved from: https://www.ijcmas.com/vol-3-2/S. Reetha,%20et%20al.pdf
Santos, R., Cruz, S., Botelho, G., & Flores, A. (2018). Inoculation of Pinus taeda Seedlings with Plant Growth-promoting Rhizobacteria. Floresta Ambient., 25(1), e20160056. https://doi.org/10.1590/2179-8087.005616
Souza, R., Ambrosini, A., & Passaglia, M. (2015). Plant growth-promoting bacteria as inoculants in agricultural soils. Genetics and Molecular Biology, 38(4), 401–419. https://doi.org/10.1590/S1415-475738420150053
Sviridova, S. S. (2019). Ukrainian forestry building strategy of increase of potential of ukrainian forestry. Black sea economic studies, 41, 121–125. Retrieved from: https://nbuv.gov.ua/UJRN/bses_2019_41_24
Vandana, U. K., Chopra, A., Choudhury, A., Adapa, D., & Mazumder, P. B. (2018). Genetic diversity and antagonistic activity of plant growth promoting bacteria, isolated from tea-rhizosphere: a culture dependent study. Biomedical Research, 29(4), 853–864. https://doi.org/10.4066/biomedicalresearch.29-18-428
Авторське право (c) 2018 http://creativecommons.org/licenses/by/4.0
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
